假如判定ELISA的敏捷度，样品应该着眼于四周的疾病预防控制中央的数据为根据，对敏捷度进行分析，通过对比套件结果与CDC日本脑炎病毒IgM抗体阳性的结果，以及从疾病的发病样品采集的天数分类，有着明显的机能差异。
        
存放试剂盒的规定有两个例外：
 1. 严格按照InBios的JE检测套件规定的样品格式进行测试，应为一式两份，并且在本次评测的所有样品中进行了测试以及选拔后所进行后续测试；
 2. Jacobson的同事提出的类似的方式进行了评估。为了进行评估，黄病毒阳性标本被定性为JE负。定性的参数也很考究的，如时间以及可以测试的样品数、易用性。此外，该试剂盒协议建议样品不宜热灭活，但是，可以在CDC协议样品中进行加热，在56℃下持续30分钟为限，达到灭活不定病毒血清检测之前的尺度。这样ELISA试剂盒按照商的指示结果进行计算和分类。 
    PANBIO建议在测试前对所有的样品进行热灭活，因此，以确定是否会影响到热灭活的PANBIO试剂盒，面板的样品（32 JEV阳性血清和13 JEV阳性脑脊液标本）的正常热灭活结果与统一时段的套件进行了匹配。就是将样品稀释，根据试剂盒中所提供的缓冲区中的指令：CSF和血清分别为1:10和1:100稀释。
 3. 用于这样的诊断试剂盒中的将测试条校准码与校准参数*地关联的方法包括，首先*地分布多个测试条校准码和其代表的几何区在多维校准参数空间。该分布的进行使分配测试条校准码之一到诊断试剂盒的测试条的量化误差*地降低。该方法还包括在诊断试剂盒的存储器中存储分布的测试条校准码。
    
抗原在试剂盒中的应用：
    抗原是指能在体内引起免疫反应的物质；某一物质能否成为抗原，首先是由它本身的某些性质决定的。抗原的纯度不高，特异性不强；合成抗原一般为多肽片段，缺乏天然抗原所具有的立体结构表位，亲和力不高，可能导致相应表位的抗体漏检：基因重组抗原具有安全、特异性强、亲和力高、产量大等特点，是一种比较理想的抗原，但其纯化比较挫折。荧光和化学发光测定的敏感度均高于比色测定，标准曲线的线性范围亦较比色反应宽，测定效果优于常用的比色ELISA。抗体在ELISA中应用的抗体可分为多克隆抗体(多抗)和单克隆抗体(单抗)。
     
    在使用双单抗一步法时，应注意抗原过剩时的“钩状效应”。而单抗仅针对抗体的单一表位，亲和力和特异性均较多抗高，且制备技术成熟，产量大，批间差异小，但结合位点的单一也正是其弱点之所在，在双抗体夹心法中，如包被和指示抗体使用同一单抗，则由于结合位点的缺乏，等闲造成假阴性结果。多为体外的蛋白、病菌等各类物质，椰油机体本身的，如自身免疫缺陷病症会对自身产生免疫。多抗取白免疫动物的抗血清，制备较简单，但抗血清成分复杂，除含针对抗原的抗体外，还含有多种其他抗体，亲和力和特异性相对要低于单抗，且制备周期长，批间差异较大。主要有3类，即自然抗原、人工合成抗原和基因重组抗原。抗原在ELISA中应用的抗原要求有较高的特异性、亲和力和纯度。

    
如何判断ELSIA的灵敏度、稳定性？
     因为各种试剂盒的机能之间没有明显的水平差异，但是在InBios试剂盒检测到的数据体现愈甚的原尺度低（P/N <10）以及介质（10≤P/N<20）CDC JEV IgM抗体阳性标本的XCyton套件。不乱性包含长期不乱性，开盖不乱性，运输不乱性，有必要还要添加热加速不乱性等。拿核酸类试剂来说，敏捷度有的时候叫zui低检测线，就是拿一个已知浓度样本稀释下去，直到试剂盒检测不出来为止，从而得到该试剂盒敏捷度到什么程度，特异性就是用该试剂盒检测与目的病原微生物在相同感染部位的阴性样本，检测试剂盒是否泛起假阳性结果，精密型比较简朴，检测一份接近但高于zui低检测线样本重复十次，计算CV值，一般核酸类试剂要求小于5%，酶免不清晰。
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